| 目的：利用体内特殊空间建立一种新的培养方式——体内培养，将兔一侧眼的晶状体前囊及囊袋放入另侧眼前房内进行培养，旨在观察相对无血-房水屏障破坏和皮质残留的情况下，晶状体上皮细胞(lens epithelial cells, LECs)在房水中的增生、分化和凋亡情况，并以白内障手术组做为对照。证明降低血-房水屏障破坏和减少皮质残留对后发性白内障（after cataract）发生率的影响。
方法：分为三组：（1）前囊组：将兔一眼晶状体前囊通过透明角膜2mm小切口送入另一眼前房内培养；（2）囊袋组：将兔一眼晶状体囊袋以相同方法送入另一眼前房内培养；（3）白内障手术组：动物双眼均行白内障囊外摘除术。8周内不同时间，通过裂隙灯观察房水闪辉和囊片透明度；Giemsa染色和TUNEL染色，光镜下观察各组细胞增生、分化和凋亡情况。
结果：（1）房闪：术后第1天前囊组及囊袋组角膜切口闭合好，切口处轻度水肿，余透明，房闪（-），无纤维素渗出，随后观察期内也未出现房闪及渗出；白内障手术组整个角膜轻度水肿，房闪（++），有少量的纤维素渗出。至术后1周，角膜基本透明，房闪（-）。（2）囊膜透明度：术后2月内，每周观察前囊组及后囊组标本，囊膜始终透明，边缘略卷曲，在前房内位置固定，无飘动。（3）细胞增生与凋亡： Giemsa染色光镜观察，前囊组培养1周~7周内，前囊下上皮细胞脱落、减少，可见细胞内空泡及核固缩。7周时，前囊几乎无细胞存留，完全透明，为一淡粉色的纤维膜。囊袋组培养1周时，在前囊与后囊接触区，后囊上可见少量细胞散在分布；3周时，细胞明显减少；5周时，后囊及赤道部几乎无细胞存留。白内障手术组术后1周时，后囊上在前后囊接触区可见大量晶状体上皮细胞；术后3周时，前后囊接触区大量晶状体纤维再生，形成Soemmering环，围绕后囊中心区，后囊中心区可见纤维化的晶状体细胞；术后5周，Soemmering环增厚，不均匀，平均约3mm，透明度下降，可见串珠样混浊。前囊组TUNEL染色检测细胞凋亡：术后不同时间细胞亡率分别为：1周为13.30±3.75，3周为75.33±5.78，5周为100.00±0.00。
结论：1. 前房培养可以较精确地观察在相对无血-房水屏障破坏，也无晶状体皮质残留的情况下，LECs在体内的增生、分化和凋亡情况，是LECs培养方式的重要进展。2.在正常房水暴露的LECs以凋亡为主，不易发生增生和分化。而血-房水屏障破坏及皮质残留等可通过细胞基质、细胞因子和营养成份等环节对暴露的LECs起到保护、刺激增生和诱导分化作用，是形成后发障的重要作用因素。
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